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熒光探針Fluo-3/AM和FuraRed測量單細胞中比率鈣
更新時間：2013-06-18
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| 熒光探針Fluo-3/AM和FuraRed測量單細胞中比率鈣 中國醫(yī)學物理學雜志1999年第3期第16卷實驗研究作者：馬曉冬朱曉亮趙 清張 瑾張 颯雷國華黃行許鮑永耀單位：馬曉冬趙 清張 瑾張 颯雷國華黃行許鮑永耀（*軍醫(yī)大學中心實驗室）；朱曉亮（南方醫(yī)院皮膚科,廣東廣州510515）關(guān)鍵詞：激光掃描共聚焦顯微鏡；Fluo-3/AM；FuraRed；比率鈣... 摘要：應用ACAS570激光掃描共聚焦顯微鏡（laser scanning confocal microscope，LSCM簡稱共焦顯微鏡）和鈣離子指示劑Fluo-3/AM 、FuraRed熒光探劑雙標記技術(shù)，測定了單個活細胞內(nèi)比率鈣的動態(tài)變化。結(jié)果顯示37 ℃, Fluo-3/AM濃度10 μmol/L，F(xiàn)uraRed濃度10 μmol/L的條件下，昆明小鼠巨噬細胞負載1 h左右即可獲良好的標記效果。用比率探針測量細胞內(nèi)Ca2+的動態(tài)變化，使Ca2+的定性定量測定不受染料濃度、細胞大小、照射光強度以及一定程度的光漂白和染料泄漏等因素的影響，提供了一種準確定性定量細胞內(nèi)Ca2+的實時、動態(tài)、原位變化的新方法。 中圖分類號：Q74 文獻標識碼：A 文章編號：1005-202X（1999）03-0180－03 Ratiometric calcium measurements in single cells with visible wavelength probes fluo-3/AM and furared MA Xiao-donget al. First Military Medical University,Central Laboratory,, ZHU Xiao-liang Department of Dermatology of Nanfang Hospital , Guangzhou 510515,China Key words：laser scanning confocal microscope ; fluo-3/AM; furared; ratiometric calcium. 細胞內(nèi)游離Ca2+不僅作為一種重要的第二信使廣泛參與細胞的運動、分泌、代謝和分化等多種細胞功能活動的調(diào)節(jié)[1]；而且胞內(nèi)游離Ca2+濃度的變化與調(diào)控對于參與維持存在于細胞質(zhì)膜或細胞器膜兩側(cè)的跨膜Ca2+梯差，介導細胞對外界刺激的應答反應具有重要的調(diào)節(jié)作用[2-4]。因此，在完整細胞上準確測定胞內(nèi)游離Ca2+濃度的動態(tài)變化，其重要性是顯而易見的。本文利用ACAS570激光掃描共聚焦顯微鏡（laser scanning confocal microscope，LSCM），采用單激發(fā)單發(fā)射指示劑Fluo-3/AM和FuraRed雙標記法測定了外源性刺激劑地塞米松誘導胞漿游離Ca2+的動態(tài)變化，獲得了良好的測定效果。 1 材料與方法 1.1 材料 ?。?）試劑：①地塞米松，用不含Ca2+、Mg2+的PBS緩沖液配制，RPMI1640培養(yǎng)基（Gibco， 德國），小牛血清（Gibco,德國）。②Fluo-3/AM（biotium公司） 、FuraRed（Molecular Probes Inc,USA）用二甲基亞砜配成1 mmol/L，置于-20℃冰箱保存，PluronicF-127（biotium公司）。③不含Ca2+、Mg2+的PBS緩沖液（g/L）: 8.01 gNaCl、Na2HPO4.12H2O、0.23 g NaH2PO4.2H2O。④Hepes緩沖液。⑤昆明種雄性小鼠（*軍醫(yī)大學動物所提供）腹腔巨噬細胞培養(yǎng)。 （2）儀器：ACAS570激光掃描共聚焦顯微鏡（Meridian,USA） 1.2 方法 ?。?）巨噬細胞培養(yǎng) 18～20 g雄性昆明小鼠，按1次/天，1 ml/次連續(xù)三天腹腔注射1%巰基乙醇酸鈉，停一天，按鄂征等人的方法取腹腔巨噬細胞（臺酚蘭吞噬實驗顯示99％為巨噬細胞），以1×106個/ml接種于特制的Petri培養(yǎng)皿（Meridian，USA）,用含10％小牛血清的RPMI-1640培養(yǎng)于37℃，含5％CO2孵箱內(nèi)。2 d后即可進行實驗。 ?。?）熒光探針標記 將培養(yǎng)2 d的小鼠腹腔巨噬細胞用Hepes緩沖液漂洗3次，滴入終濃度為10 μmol/L的Fluo-3/AM 和FuraRed，加入1 μl 25％ pluronic F-127，在37 ℃、5%CO2孵箱中孵育1 h，其間輕輕振蕩幾次，經(jīng)Hepes緩沖液漂洗2次后，再滴入Hepes液0.5 ml。 ?。?）Ca2+動態(tài)變化的LSCM測定 LSCM由共聚焦顯微鏡主體，激光器（Ar+激光）和微型計算機構(gòu)成。激光束的掃描與控制以及圖像數(shù)據(jù)的采集和加工均由計算機完成。將標記好熒光探劑Fluo-3/AM和FuraRed的小鼠腹腔巨噬細胞，放入激光掃描共聚焦顯微鏡測定小室，用裝有Olympus IMT-2倒置相差顯微鏡和40×物鏡ACAS570激光掃描共聚焦顯微鏡系統(tǒng)掃描成像。用488 nm氬離子激光同時激發(fā)兩種染料，用ACAS570多彩色濾光盤（Molti-Color Filter Wheel）提供的530/30 nm帶通濾光器和605 nm長通濾光器將兩者的發(fā)射光分開，用有增輝電路的DageCCD攝像機，以1.0秒的間隔記錄。數(shù)據(jù)通過圖像采集器直接送入計算機，然后用ACAS570-IQ分析軟件分析。 2 結(jié)果 ?。?）用外源性刺激劑地塞米松測得巨噬細胞中Fluo-3和FuraRed對細胞內(nèi)Ca2+的熒光強度變化曲線。在本實驗中，將地塞米松（終濃度為1.5μM）加到巨噬細胞培養(yǎng)液中（100sec后），引起細胞內(nèi)Ca2+迅速增加，隨后逐漸達到平臺。兩種染料的熒光強度動態(tài)變化曲線清楚的表明，加地塞米松時（100sec）引發(fā)Fluo-3熒光急劇增強，同時伴有FuraRed熒光減弱，提示Ca2+增加（圖1）。在加地塞米松前和Ca2+反應的峰值時，兩種染料的相對熒光強度以灰度圖表示（圖2）。 圖1 地塞米松刺激后，小鼠腹腔巨噬細胞負載Fluo-3/AM和FuraRed的熒光強度變化曲線檢測器1（Det1）Fluo-3/AM通過530/30nm帶能濾光器后單激發(fā)的熒光強度變化曲線檢測器2（Det2） FuraRed 通過605 nm長通濾光器后單激發(fā)的熒光強度變化曲線 （上圖） （下圖） 圖2 地塞米松處理前，小鼠腹腔巨噬細胞負載Fluo-3/AM、FuraRed的熒光灰度圖像（上圖）和處理后小鼠腹腔巨噬細胞負載Fluo-3/AM、FuraRed的熒光灰度圖像（下圖）。檢測器1（Detector1）表示負載Fluo-3/AM。檢測器2（Detector2）表示負載FuraRed。 ?。?）為了定量熒光變化，按實驗中每個時間點求得Fluo-3/AM探針發(fā)射強度與FuraRed探針發(fā)射強度的比率。巨噬細胞對地塞米松反應的動態(tài)變化曲線表明，熒光比率迅速增加1.2倍，隨后逐漸達到飽和狀態(tài)（圖3）。 圖3 地塞米松處理后，小鼠腹腔巨噬細胞負載 Fluo-3/AM、FuraRed的比率熒光動態(tài)變化曲線 3 討論 （1）在比率法中用兩種染料同時標記，需要其比率在細胞內(nèi)Ca2+濃度不變時保持穩(wěn)定。兩種染料的泄漏、區(qū)域化分布、漂白或代謝等均能導致實驗過程中比率不穩(wěn)定。Fluo-3/AM和FuraRed都對光漂白敏感，對經(jīng)過10 μmol/LFluo-3/AM和10 μmol/LFuraRed孵育的巨噬細胞連續(xù)掃描，在本實驗中地塞米松處理之前兩種染料熒光強度的基線值（圖1）及其比率熒光強度的基線值（圖3）都是穩(wěn)定的。這些結(jié)果表明：巨噬細胞中染料無預先發(fā)生的光漂白或泄漏；Fluo-3/AM和FuraRed用在比率法中是可行的。 ?。?）FuraRed是近年來研制的一種*的Ca2+指示劑，發(fā)射640nm波長的熒光，熒光強度隨FuraRed與Ca2+結(jié)合的增加而減弱[5,6]。相反Fluo-3發(fā)射530nm較短波長的熒光，熒光強度隨Fluo-3/AM與Ca2+結(jié)合的增加而增強[7,8]。據(jù)此提供了一種定量細胞內(nèi)Ca2+可見光激發(fā)的比率方法：將Fluo-3/AM和FuraRed聯(lián)合使用，用488nm的可見光（激光）激發(fā)，來測定細胞內(nèi)比率Ca2+的實時、動態(tài)變化。由于這兩種染料與Ca2+結(jié)合發(fā)出的熒光量呈相反的變化，所以增加了對Ca2+檢測的靈敏度。 （3）Fluo-3/AM和FuraRed都是很好的Ca2+指示劑。聯(lián)合使用兩種指示劑，用單一可見光激發(fā)能為用比率法測量細胞內(nèi)比率Ca2+提供一種*的有價值的方法。類似的比率測定法還有很多，如用兩種染料同時測量Ca2+和pH[5,9]。但這些方法需要兩種不同的熒光探針，而且須特別注意染料負載、光漂白和染料泄漏，每一種因素在各次實驗之間可能明顯地影響比率。使用Fluo-3/AM和FuraRed能提供一種Ca2+測量方法并具有可見光激發(fā)的優(yōu)點。 參考文獻： [1] Capham D E. Cell, 1995，80: 259 . [2] Yang F Y, Tu Y P. Biochem Biophys Res Commun, 1991，175: 366. [3] Fan G F, Huang Y G, Bai Y H, et al. FEBS Lett, 1995，357: 13. [4] Yang X Y, Fan G F, Huang Y G, et al. Chin Sci Bull, 1996; 41: 338. [5] Haugland R P. （1992） Molecular probes Catalog. [6] Durebayashi N, Harkins A B, and Baylor S M. Biophysical J, 1992， 61: A160. [7] Minta A, Kao J P Y, and Tsien R Y. Biol Chem, 1989，264: 8171. [8] Kao J P Y, Harootunian A T, and Tsien R Y. Biol Chem, 1989，264: 817. [9] Rijkers G T , Justement L R, Griffeoen A W, and J. C. Cambier Cytometry, 1990，11: 923. |
